珍稀濒危树种金钱槭的基因组DNA提取方法研究

摘要 ［目的］明确高效提取金钱槭基因组DNA的方法。［方法］以金钱槭幼嫩叶片为材料，采用4种不同方法提取金钱槭基因组DNA，并通过紫外分光光度计法、琼脂糖凝胶电泳检测、限制性内切酶酶切和扩增保守基因片段等方法比较不同DNA的提取效率。［结果］高盐低pH法因操作时间较长导致DNA损失较多，提取到的DNA虽然杂质含量较低，但浓度也较低。SDS法提取效果不佳，提取到的DNA含量少且完整性差。尿素法提取的DNA质量最差，降解严重，难以用于后续分子生物学研究。改良CTAB法可以大量提取能够用于酶切及PCR扩增的DNA。［结论］金钱槭DNA高效提取方法的确定可以为相关的分子生物学研究提供科学依据和技术参考。

关键词 金钱槭；DNA提取；CTAB法

中图分类号 S792.35  文献标识码 A  文章编号 0517-6611（2024）03-0091-04

doi：10.3969/j.issn.0517-6611.2024.03.021

Study on Genomic DNA Extraction Methods for the Rare and Endangered Tree Species Dipteronia sinensis Oliv.

Abstract ［Objective］To determine efficient method for extracting genomic DNA from D. sinensis.［Method］Four methods were used to extract genomic DNA from young leaves of D.sinensis.The efficiency of genomic DNA extraction was assessed by ultraviolet spectrophotometer， agarose gel electrophoresis， restriction enzyme digestion， and amplification of conserved gene fragments.［Result］The results showed that the high-salt， low-pH method led to more DNA loss due to the extended operation time， resulting in low concentration of DNA with low impurity content. The SDS method had a poor extraction efficiency， yielding DNA with low content and poor integrity. The urea method produced the worst DNA extraction， with severe degradation that renders it unsuitable for molecular biology research. The improved CTAB method successfully extracted a large amount of DNA suitable for enzyme digestion and PCR amplification. ［Conclusion］The determination of an efficient DNA extraction method will provide scientific basis and technical references for related molecular biology research of D. sinensis.

Key words Dipteronia sinensis Oliv.;DNA extraction;CTAB method

金钱槭（Dipteronia sinensis Oliv.）是无患子科（Sapindaceae Juss.）金钱槭属（Diteronia Oliv.）落叶小乔木，高5～10 m，是我国特有的濒危树种，主要分布在我国西南地区。金钱槭树形优美，树干挺直，纹理清晰，材质细密，兼具观赏价值与经济价值［1］。目前，对金钱槭的研究主要集中在保护策略［2］、种群分布［3］和保护基因组学［4］上，但缺乏针对金钱槭基因组DNA提取方法的比较研究，目前有关高效提取金钱槭基因组DNA的方法鲜见报道。由于DNA的质量对其下游的分子生物学研究至关重要，因此找到高效提取金钱槭DNA的方法具有重要意义。笔者以金钱槭新鲜叶片为材料，采用改良CTAB法、SDS法、高盐低pH法和尿素法4种常用的提取方法，通过比较分析，找到最适合提取高品质金钱槭DNA的方法，旨在为后续有关金钱槭的分子生物学研究提供试验依据。

1 材料与方法

1.1 试验材料

2022年3月下旬将采于湖北省神农架林区的金钱槭新鲜枝条修剪为10 cm长的插穗，每根插穗保留2～3个嫩芽，将基部浸泡于含有0.01%（W/V）NAA的基质中处理20 h［5］后，扦插于蛭石与泥炭土等体积混合的土壤基质中。扦插材料放置于华中农业大学植物生长室培养，培养条件为16 h光照，8 h黑暗，温度为23  ℃。在生长室培养30 d后，用剪刀剪下萌发的新鲜叶片，迅速用液氮冷冻，并放置于-80  ℃超低温冰箱保存备用。

1.2 DNA提取方法

共采用改良CTAB法、SDS法、高盐低pH法和尿素法4种常用方法，用于提取金钱槭嫩叶的基因组DNA。每种方法3次重复。

1.2.1 改良CTAB提取方法。试验步骤根据传统CTAB法并稍作修改，在原CTAB提取液中加入2% β-巯基乙醇和4%聚乙烯吡咯烷酮K40，具体为：①取-80 ℃超低温冰箱保存的叶片在液氮中充分研磨，称取约50 mg粉末并迅速转移到用液氮预冷的2 mL离心管中；②加入400 μL于65 ℃预热的CTAB提取液，在恒温混匀仪（Eppendorf，ThermoMixer C）中65 ℃摇晃混匀30  min；③加入等体积氯仿∶异戊醇溶液 （24∶1）， 颠倒混匀后11 000 r/min离心10 min，吸取上清液；④加入等体积异丙醇，11 000 r/min离心10 min，弃掉上清液，并用75%（V/V）乙醇洗涤沉淀3次；⑤11 000 r/min离心2 min，将残留的乙醇吸净并吹干；⑥加入200 μL含0.1 mg RNase的TE缓冲液充分溶解DNA，在恒温混匀仪中37 ℃孵育30 min，然后将DNA样品保存于-20 ℃冰箱中备用。

1.2.2 SDS提取方法。参考王书珍等［6］使用的方法并稍作修改，具体为：①取-80 ℃超低温冰箱保存的叶片在液氮中充分研磨，称取约50 mg粉末并迅速转移到用液氮预冷的2 mL离心管中；②加入400 μL于65 ℃预热的SDS提取液，在恒温混匀仪中65 ℃摇晃混匀30 min；③加入200 μL 5 mol/L KAc，充分混匀后冰浴20 min，然后11 000 r/min离心10 min，吸取上清液，转移到新的1.5 mL离心管中；④加入等体积氯仿∶异戊醇溶液（24∶1），颠倒混匀后11 000 r/min离心10 min，吸取上清液；⑤加入2倍体积的无水乙醇，-20 ℃沉淀2 h；⑥11 000 r/min离心10 min，弃掉上清液，并用70%（V/V）乙醇洗涤沉淀3次；⑦11 000 r/min离心2 min，将残留的乙醇吸净并吹干；⑧加入200 μL含0.1 mg RNase的TE缓冲液充分溶解DNA，在恒温混匀仪中37 ℃孵育30 min，然后将DNA样品保存于-20 ℃冰箱中备用。

1.2.3 高盐低pH提取方法。参考邵亚林等［7］使用的方法并稍作修改，具体为：①取-80 ℃超低温冰箱保存的叶片在液氮中充分研磨，称取约50 mg粉末并迅速转移到用液氮预冷的2 mL离心管中；②加入400 μL于65 ℃预热的DNA提取液，在恒温混匀仪中65 ℃摇晃混匀30 min；③11 000 r/min离心10 min，吸取上清液；④加入2/3体积的2.5 mol/L KAc（pH=4.8），充分混匀后冰浴30 min，然后11 000 r/min离心10 min，吸取上清液，转移到新的1.5 mL离心管中；⑤加入等体积异丙醇，-20 ℃沉淀30 min；⑥11 000 r/min离心10 min，弃掉上清液，并用70%（V/V）乙醇洗涤沉淀3次；⑦11 000 r/min离心2 min，将残留的乙醇吸净并吹干；⑧加入200 μL含0.1 mg RNase的TE缓冲液充分溶解DNA，在恒温混匀仪中37 ℃孵育30 min，然后将DNA样品保存于-20 ℃冰箱中备用。

1.2.4 尿素提取方法。参考韩玉杰等［8］使用的方法并稍作修改，具体为：①取-80 ℃超低温冰箱保存的叶片在液氮中充分研磨，称取约50 mg粉末并迅速转移到用液氮预冷的2 mL离心管中；②加入400 μL于65 ℃预热的尿素提取液，在恒温混匀仪中65 ℃摇晃混匀30 min；③加入等体积氯仿∶异戊醇溶液（24∶1），颠倒混匀后11 000 r/min离心10 min，吸取上清液；④加入等体积异丙醇，11 000 r/min离心10 min，弃掉上清液，并用70%（V/V）乙醇洗涤沉淀3次；⑤11 000 r/min离心2 min，将残留的乙醇吸净并吹干；⑥加入200 μL含0.1 mg RNase的TE缓冲液充分溶解DNA，在恒温混匀仪中37 ℃孵育30 min，然后将DNA样品保存于-20 ℃冰箱中备用。

1.3 紫外分光光度计检测

取2 μL DNA提取液，以含0.1 mg RNase的TE缓溶液为对照，使用紫外分光光度计（Thermo，NanoDrop 2 000）检测DNA的纯度和浓度，用A260/A280表示DNA的相对纯度，用DNA产量（μg）与叶片鲜重FW（g）的比值表示DNA得率（μg/g）。

1.4 琼脂糖凝胶电泳检测

取5 μL DNA样品，以DL 15 000 DNA Marker（Takara）为对照，经0.8%琼脂糖凝胶（Coolaber）电泳后用凝胶成像系统（NEWBIO INDUSTRY，Molecular Imager Gel Doc EX System）观察拍照。

1.5 PCR扩增检测

选用叶绿体DNA（cpDNA）片段trnT-psbc［9］和内参基因β-ACTIN［10］设计通用引物（表1），引物由上海生工生物工程股份有限公司合成。以4种方法提取到的DNA为模板，使用PCR 仪（Eppendorf，Master-cycler nexus eco）进行产物扩增。cpDNA片段trnT-psbc的PCR反应条件： 95  ℃ 5 min，95  ℃ 15 s，60  ℃ 20 s， 72  ℃ 3 min，20个循环，72  ℃ 10 min；内参基因β-actin的PCR反应条件：95  ℃ 5 min，95  ℃ 15 s，60  ℃ 20 s，72  ℃ 15 s，30个循环，72  ℃ 10 min。PCR反应体系（10 μL）为：5 μL 2× Taq Plus Master Mix Ⅱ（Vazyme），上、下游引物（各10 μmol/L），20 ng模板DNA，超纯水补足剩余体系。

取2个片段的扩增产物，分别以DL 5 000、DL 500 DNA Marker（Takara）为对照，经1.5%和3.0%琼脂糖凝胶（Coolaber）电泳后用凝胶成像系统观察拍照。

1.6 EcoRI酶切检测

酶切反应体系（20 μL）：2 μL 10 × Buffer EcoRI（Thermo），1 μL EcoRI（Thermo），3 μg DNA，使用超纯水补足剩余体系。37 ℃水浴过夜后，终产物以DL 5 000 DNA Marker（Takara）为对照，进行0.8%琼脂糖凝胶（Coolaber）电泳，电泳结束后用凝胶成像系统观察拍照。

2 结果与分析

2.1 紫外分光结果

紫外分光光度计可对4种方法获得的金钱槭DNA纯度和浓度进行检测：A260/A280在1.8～2.0时，一般可以认为DNA纯度较高；A260/A280在1.8以下时，认为DNA纯度较低，可能含有蛋白质或酚类物质等杂质；当A260/A280为2.0以上时，认为RNA是DNA中主要的污染物质。检测结果见表2，4种方法提取的DNA，A260/A280为1.8～2.0，表明DNA纯度较高，4种方法都能去除大部分杂质污染。浓度和得率的计算结果表明，改良CTAB法提取到的DNA量最多，其次是高盐低pH法，SDS法第3，尿素法提取到的DNA量最少。